如何用二氧化碳培養(yǎng)箱進(jìn)行細(xì)胞復(fù)蘇、傳代及凍存實驗
一 復(fù)蘇 傳代
(1) 準(zhǔn)備
無菌超凈臺,酒精燈,75%酒精噴壺,二氧化碳培養(yǎng)箱,37℃水浴鍋,離心機(jī);培養(yǎng)瓶,含10%胎牛血清的*培養(yǎng)基和基礎(chǔ)培養(yǎng)基以及PBS磷酸緩沖液(提前放置超凈臺使平衡到室溫),無菌工作服(白大褂),口罩,手套,記號筆
(2) 步驟
1.穿好無菌工作服,帶上口罩和手套,快速從液氮里取出凍存管,快速放進(jìn)37℃水浴鍋緩慢搖晃使細(xì)胞解凍,注意凍存管的封口膜不要破裂,防止污染。
2.解凍后用紙擦干凍存管表面的水滴,酒精噴壺噴灑適量75%酒精消毒凍存管封口處。
3.開超凈臺,點(diǎn)燃酒精燈燃燒片刻后(可提前準(zhǔn)備),凍存管放超凈臺,換新手套,小心打開凍存管,避免污染,無菌吸管將1ml細(xì)胞全部吸出至5ml無菌EP管,補(bǔ)加9ml基礎(chǔ)培養(yǎng)基稀釋,1000rpm,離心5min使細(xì)胞沉淀,棄上清。
4.加入新鮮配制的含10%血清的培養(yǎng)基4ml,輕輕混勻,用吸管將細(xì)胞移至25T培養(yǎng)瓶。
5.平躺放置培養(yǎng)瓶,8字形混勻后,置于37℃,5%二氧化碳培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
6.培養(yǎng)24小時后,顯微鏡觀察細(xì)胞(貼壁細(xì)胞)貼壁后,小心更換培養(yǎng)基,根據(jù)不同細(xì)胞的生長狀態(tài)進(jìn)行傳代培養(yǎng),培養(yǎng)瓶上標(biāo)記:操作者,時間,細(xì)胞類型。
7.有的實驗員的培養(yǎng)基會加入抗生素防止細(xì)胞污染,但是這對于掌握細(xì)胞培養(yǎng)是非常不利的,不加抗生素培養(yǎng)細(xì)胞更能提醒實驗者無菌操作的意識。一旦細(xì)胞出現(xiàn)污染,易于發(fā)現(xiàn),一旦發(fā)現(xiàn)污染的細(xì)胞應(yīng)立刻煮沸丟棄,以免污染同實驗室其他細(xì)胞。
8.細(xì)胞長滿90%-100%即可傳代,小心打開培養(yǎng)瓶,瓶口過酒精燈消毒,棄培養(yǎng)基。
9.加入1mlPBS,潤洗細(xì)胞,重復(fù)3次,棄PBS。
10.加入4ml*培養(yǎng)基,用無菌吸管小心吹打貼壁細(xì)胞或者用胰蛋白酶消化細(xì)胞使細(xì)胞脫落。
11.轉(zhuǎn)移1/2脫落的細(xì)胞至新的培養(yǎng)瓶,各瓶補(bǔ)加*培養(yǎng)基至4ml。
12.小心封口,平躺放置培養(yǎng)瓶,8字形混勻后,置于37℃,5%二氧化碳培養(yǎng)箱培養(yǎng)。
13.待長滿后,按同樣的方法傳代培養(yǎng)。
二 凍存
當(dāng)不需要使用細(xì)胞或者細(xì)胞量足夠時,可以將細(xì)胞凍存起來,供以后實驗用
(1) 準(zhǔn)備
細(xì)胞凍存液(20%血清、10%DMSO、70%基礎(chǔ)培養(yǎng)液),梯度降溫盒
(2) 步驟
1.選取活力好,密度約70%細(xì)胞用于凍存,此時細(xì)胞處于對數(shù)生長期,用于凍存。
2 .細(xì)胞吹打或者胰酶消化后,轉(zhuǎn)移至無菌EP管,1000rpm里面5min。
3.棄上清,加入新鮮配制的細(xì)胞凍存液,25T細(xì)胞可以加入2ml細(xì)胞凍存液,分裝2個凍存管,細(xì)胞*密度為5*106-1*107個每ml。
4.做好標(biāo)記,放入梯度降溫盒(提前平衡至室溫)。
5.將梯度降溫盒放入-80℃冰箱過夜,第二天取出凍存管,快速放入液氮保存。
遵循“快速復(fù)蘇,緩慢凍存”的原則。