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谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)活性檢測試劑盒 (可見分光光度法)

來源:上海尚寶生物科技有限公司   2025年01月13日 11:03  

谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)活性檢測試劑盒

(可見分光光度法)

產品貨號:BA1115

 

產品規(guī)格:50/24

 

產品簡介:

谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase, GSH-Px/GPX)是機體內廣泛存在的一種重要的過氧化物分解酶。GPX能夠催化還原型谷胱甘肽(GSH)生成氧化型谷胱甘肽(GSSG),使有毒的過氧化氫還原成無毒的羥基化合物。

GPX催化H2O2氧化GSH,產生GSSG,GSH能與DTNB生成在412nm處有特征吸收峰的化合物,412nm下吸光度的下降即可反應GPX的活性。

注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者 增加樣本量進行檢測。

 

產品內容:

試劑名稱

規(guī)格

保存條件

提取液

液體40mL×1

2-8

試劑一

粉劑×1

2-8

試劑二

粉劑×1

2-8

試劑三

液體20 μL×1

2-8

試劑四

液體60mL×1

2-8

試劑五

液體15mL×1

2-8

試劑六

液體15mL×1

2-8

標準品

粉劑×1

2-8

溶液的配制:

1. 試劑一:臨用前加入5.5mL蒸餾水溶解;

2. 試劑二:臨用前加入6.6mL蒸餾水充分溶解待用;

3. 試劑三:液體置于試劑瓶內EP管中。臨用前按1μL試劑三:1mL蒸餾水的比例稀釋試劑三,現用現配;

4. 試劑四:瓶底若有結晶可50℃水浴溶解,此溶液為飽和溶液,若底部最終還有結晶,吸取上清使用即可;

5. 標準品:10mg還原型谷胱甘肽。臨用前加入1.62mL蒸餾水溶解為20μmol/mL的標準溶液備用。

 

需自備的儀器和用品:

可見分光光度計、天平、臺式離心機、1mL玻璃比色皿、可調式移液槍、研缽/勻漿器、EP管。

 

操作步驟

一、粗酶液的提取: 

1. 組織:按照組織質量(g:提取液體積(mL)15~10的比例(建議稱取0.05g組織,加入1mL提取液)進行冰浴勻漿。10000rpm4℃離心10min,取上清置冰上待測(如上清不清澈,再離心3min)。

2. 細菌、真菌:按照細胞數量104個:提取液體積(mL500~1000:1的比例,建議500萬細胞加入1mL提取液),冰浴超聲波破碎細胞(率300w,超聲3 s,間隔7s,總時間3min)然后10000rpm4℃,離心10min,取上清置冰上待測(如上清不清澈,再離心3min)。

3. 血清(漿)等液體:直接測定。

二、測定步驟: 

1. 分光光度計預熱30min以上,調節(jié)波長至412nm,蒸餾水調零。

2. 20μmol/mL標準液用提取液稀釋為0.2μmol/mL的標準溶液。再吸取100μL標準溶液與400μL試劑四混勻待用,此標準液混合物的濃度為0.04μmol/mL。標準液混合物現用現配。

3. 樣本混合物:將150μL樣本與150μL試劑一混合后室溫放置5min。

4. 操作表:(1.5mL離心管中依次加入下列試劑)


測定管

對照管

樣品混合物(μL

100

-

試劑二(μL

100

100

37℃下預熱5min

試劑三(μL

100

100

37℃下反應5min

試劑四(mL

1

1

樣品混合物(μL

-

100

4000rpm常溫離心5min,取上清。

試劑名稱(μL

測定管

對照管

標準管

空白管

蒸餾水

100

100

100

100

提取液

-

-

-

100

上清液

500

500

-

-

標準液混合物

-

-

500

-

試劑四

-

-

-

400

試劑五

200

200

200

200

試劑六

200

200

200

200

混勻后盡快測定412nm下的吸光度,分別記為A測定管、A對照管、A標準管、A空白管。計算△A測定=A對照管-A測定管,△A標準=A標準管-A空白管。

三:GPX活性計算: 

1. 抑制百分率的計算

抑制百分率=(A對照管-A測定管) ÷A對照管-A空白管)× 

盡量使樣品的抑制百分率在30-70%范圍內,越靠近50%越準確。如果計算出來的抑制百分率小于30%或大于70%,則通常需要調整加樣量后重新測定。如果測定出來的抑制百分率偏高,則需適當稀釋樣品;如果測定出來的抑制百分率偏低,則需重新準備濃度比較高的待測樣品。

2. GPX活性計算

1)按蛋白濃度計算

活力單位定義:每mg蛋白在反應體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個酶活力單位。

GPX (U/mg prot) =ΔA測定÷△A標準÷C標)×1000×V酶促÷Cpr×V樣)÷T

=208×ΔA測定÷△A標準÷Cpr。 

2)按樣本鮮重計算

活力單位定義:每g樣品在反應體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個酶活力單位。

 

GPX (U/g 鮮重)= ΔA測定÷△A標準÷C標)×1000×V酶促÷(V÷V樣總×W)÷T

=208×ΔA測定÷△A標準÷W。

3按細胞數量計算

活力單位定義:每104個細胞在反應體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個酶活力單位。

GPX (U/104 cell)= ΔA測定÷△A標準÷C標)×1000×V酶促÷(細胞數量×V÷V樣總)÷T

=208×ΔA測定÷△A標準÷細胞數量。

4按液體體積計算

活力單位定義:每毫升液體在反應體系中每分鐘催化1nmol GSH氧化定義為一個酶活力單位。

GPX (U/mL)= ΔA測定÷△A標準÷C標)×1000×V酶促÷V÷T=260×ΔA測定÷△A標準。

C標:標準液混合物的濃度:0.04μmol/mL;V酶促:酶促反應體系體積,1.3mL;V樣:樣本混合物中含有的樣本體積,0.05mL;V樣總:提取液體積,1mL;Cpr:上清液蛋白濃度(mg/mL);T:反應時間,5min;細胞數量:以萬計;W:樣品質量,g;1000:換算系數,1μmol=1000nmol

 

注意事項 

1. 吸光度若大于1.2時,建議將樣本用提取液稀釋后進行測定。

2. 建議一次不要做過多樣本以免檢測時間過長影響顯色,使測定不準確。

 

 


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