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質(zhì)譜在蛋白質(zhì)藥物二硫鍵分析中的應(yīng)用

閱讀:2056      發(fā)布時間:2019-8-13
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二硫鍵對于穩(wěn)定蛋白質(zhì)藥物的空間結(jié)構(gòu), 保持其活性具有重大的作用。而在蛋白質(zhì)藥 物的生產(chǎn)過程中,由于成本控制的需求,往 往追求較大的蛋白質(zhì)表達(dá)濃度,而使發(fā)生二 硫鍵錯配(disulfide scramble)的可能性有所上 升[1] 。因此,二硫鍵的連接確證成為蛋白質(zhì)藥 物質(zhì)量表征的必須環(huán)節(jié)。相對于對角線電泳 法、突變分析法、部分還原測序法,以及X晶 體衍射和核磁共振等技術(shù),串聯(lián)質(zhì)譜在靈敏 度、準(zhǔn)確性、操作性等多方面*優(yōu)勢,已 經(jīng)成為二硫鍵表征的主流方法[2] 。早期的二硫 鍵液質(zhì)分析,采用人工對比還原與非還原肽 圖數(shù)據(jù)策略(圖1),來確定二硫鍵。這種策 略的靈敏度差、分析通量低、不同分析人員 造成的分析結(jié)果差異較大。近年隨著質(zhì)譜及 軟件技術(shù)的迅猛發(fā)展,目前二硫鍵分析工作, 已經(jīng)進(jìn)入了直接分析階段,也就是直接采集 非還原蛋白質(zhì)藥物肽圖串聯(lián)質(zhì)譜數(shù)據(jù),并通 過化軟件自動化查找二硫鍵。

 

在二硫鍵的質(zhì)譜分析中,碰撞誘導(dǎo)解離 (CID)與高能碰撞解離(HCD)是普遍的二級碎裂方法。使用HCD/CID作為采集二硫鍵 數(shù)據(jù)的優(yōu)點(diǎn)主要有:碎片信號較豐富,且強(qiáng) 度較均勻,采集頻率快,以及儀器價格經(jīng)濟(jì)。 圖2為鏈間、鏈內(nèi)以及復(fù)合型二硫鍵連接肽段 的二級碎片圖譜示例[3] 。

 

蛋白質(zhì)藥物二硫鍵分析主要有兩種需求, 分別是1)對期望二硫鍵連接的驗(yàn)證;2)對 未知(錯配)二硫鍵的發(fā)現(xiàn)。在針對種 需求進(jìn)行分析時,一般會將預(yù)期的二硫鍵連 接方式輸入軟件。分析軟件僅是在提供的連 接方式中尋找是否有匹配的質(zhì)譜信號。第二 種需求則是在僅提供蛋白氨基酸序列的情況 下,對未知(錯配)二硫鍵進(jìn)行發(fā)現(xiàn)鑒定。 由于蛋白質(zhì)中存在眾多的半胱氨酸,而任意 兩個半胱氨酸都存在形成二硫鍵的可能性, 加之考慮到可能存在的非特異性酶切以及可 變修飾等因素,致使各種連接可能性的數(shù)目 以組合爆炸的規(guī)模出現(xiàn)。面對這種嚴(yán)酷的分 析要求,軟件需具有*大的數(shù)據(jù)處理性能。

軟件已經(jīng)成為二硫鍵分析的關(guān)鍵一環(huán)。其中專門針對Orbitrap系列質(zhì)譜碎裂特點(diǎn)所設(shè)計(jì) 的軟件種類多,如pLinks[3,4] 、StavroX[5] 等, 這也從一個側(cè)面說明了Orbitrap型質(zhì)譜在二硫 鍵分析中已被為廣泛地應(yīng)用。在這些軟件 中,較為出色的如pLinks具有了令人振奮的數(shù) 據(jù)分析性能。在進(jìn)行錯配二硫鍵發(fā)現(xiàn)時, pLinks可在考慮肽段N、C兩端都為非特異性酶 切,并含可變修飾條件下,在幾分鐘內(nèi)就可 完成二硫鍵數(shù)據(jù)檢索。Thermo 新近推出的 PepFinder作為整合的生物制藥軟件分析平臺, 同樣具備了未知二硫鍵檢索功能,為分析人 員的工作提供了極大的便利。

 

需要指出的是,二硫鍵分析實(shí)驗(yàn)由于需要 在不*對蛋白質(zhì)進(jìn)行變性(不還原二硫鍵) 的情況下進(jìn)行,酶切相對普通肽圖分析(蛋 白質(zhì)被充分變性后酶切),較難一次得到理 想的酶切效果,因此在樣品處理方面,需要 根據(jù)不同的樣品,摸索和優(yōu)化樣品處理方法。 考慮的因素包括:酶切的時間、多酶酶切選 擇[6] ,減少堿性環(huán)境、封閉自由半胱氨酸以避 免引入錯配二硫鍵等等 [3,7] 。這些都是在實(shí)驗(yàn) 設(shè)計(jì)及結(jié)果分析中需要特別注意的方面。

 

此外,二硫鍵分析還具有一般肽圖分析不 具有的復(fù)雜性,如:鏈內(nèi)二硫鍵[8] 、多對以上 二硫鍵結(jié)構(gòu) ( 如 cystine Knot and nested disulfide)[6] 、糖肽形與二硫鍵同時存在[9] 、通 過二硫鍵形成的環(huán)肽[10] 等。在這些情況下, 單純使用一種碎裂方法所獲得的信息有限, 因此ETD與MSn等質(zhì)譜技術(shù)就成為了CID/HCD技 術(shù)的有效補(bǔ)充。

ETD技術(shù)作為與CID/HCD并列的多肽碎裂 技術(shù),其碎片特性與后兩者有著明顯的不同。 在二硫鍵碎裂方面,明顯的差異就是, CID/HCD無法打開二硫鍵,以及含鏈內(nèi)二硫肽 段在兩個半胱氨酸之間的序列區(qū)域無法產(chǎn)生碎片。而ETD在這兩種情況下都可以產(chǎn)生碎片 [11] 。如圖X。顯而易見,ETD與CID/HCD產(chǎn)生的 碎片信息互補(bǔ)性*,綜合使用將非常有利 于終得到可信的結(jié)果[7] 。

多級質(zhì)譜也是針對復(fù)雜二硫鍵分析時可以 選擇的一種方法。Wu等使用ETD對含二硫鍵 肽段進(jìn)行二級碎裂后,根據(jù)其碎片特點(diǎn)進(jìn)行 CID-MS3碎片采集(圖4),得到了更豐富的碎 片信息,這種方法已經(jīng)廣泛應(yīng)用于多種蛋白 質(zhì)藥物產(chǎn)品的分析中[7,12] 。

 

在ETD與MSn聯(lián)用的方法中,對于一級質(zhì) 譜中發(fā)現(xiàn)的母離子,平行進(jìn)行CID與ETD二級 信息采集。通過兩種碎裂方式產(chǎn)生碎片互補(bǔ) 性,可得到更為充分的序列信息。此外,對于鏈間二硫鍵,由于ETD自身特點(diǎn),在ETD的 二級碎片中,常常會出現(xiàn)兩種強(qiáng)信號。 種強(qiáng)信號是由單純的二硫鍵斷裂(兩條肽段 分離,但都各自保持完整,表示為Pep1和 Pep2)產(chǎn)生的。在這種情況下,可以分別針 對Pep1和Pep2采集三級CID碎片。這樣就可以 分別得到兩個肽段各自清晰的碎片信息。顯 而易見,相對于兩種肽段混在一起的MS2碎片, MS3碎片信息更具針對性,從而大大提高了其 鑒定可信度,與碎片覆蓋度。二級ETD經(jīng)常產(chǎn) 生的另一種強(qiáng)信號,表面上看是一級母離子 減少電荷的形式。而其中實(shí)際包含了1)已發(fā) 生碎裂,但Pep1與Pep2仍通過非共價鍵粘附 在一起的形式,以及2)真正的單純減少電荷離 子形式。對于后者,可以通過增加活化能以 及MS3、MS4等方法,進(jìn)一步挖掘序列信息。

 

串聯(lián)質(zhì)譜技術(shù),已經(jīng)成為蛋白質(zhì)藥物二硫 鍵分析重要的手段。在Orbitrap及離子阱質(zhì) 譜高質(zhì)量的數(shù)據(jù)條件下,加之軟件技術(shù)的巨大發(fā)展,使得二硫鍵檢索分析實(shí)現(xiàn)了快速、 準(zhǔn)確、高通量的要求,從而使二硫鍵分析進(jìn) 入了常規(guī)化分析時代。

 

更多產(chǎn)品信息請點(diǎn)擊:Orbitrap型質(zhì)譜

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